Information

Hur tolkar du denna mikrobiologi/bakteriologiska forskningsfigur?

Hur tolkar du denna mikrobiologi/bakteriologiska forskningsfigur?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Det här är en siffra från en forskningsartikel som jag ska göra en seniorpresentation för. Det visar bakteriell replikation av en enterisk bakteriepopulation. Forskarna antar att antalet regioner nära replikationens ursprung kommer att vara den högsta punkten (toppen) på grafen och terminalregionen kommer att vara den lägsta punkten eftersom det finns minst kopior av denna region i en delande art. De bestämmer att förhållandet mellan topp och dal kommer att återspegla artens tillväxthastighet. Med det sagt förstår jag inte deras användning av färg. Toppen har flera olika färger som inte verkar matcha något av exemplen till höger. Undrar om någon kan hjälpa mig att tyda detta? Tack!


Det korta svaret är att det ser ut som att färgerna är tänkta att representera olika, partiella kopior av bakteriegenomet i processen att syntetiseras.

När bakterier replikerar, initierar de replikation vid ursprunget till sina kromosomer. Faktum är att dessa ursprung kan replikeras flera gånger innan det når "änden" av den bakteriella kromosomen (terminalen). Det ser ut som om staplingen på den högra figuren visar detta, med färgerna som bara hjälper till att skilja de delvis replikerade kromosomerna. Täckningsdiagrammet till vänster visar hur detta kan se ut baserat på lästäckning från djup sekvensering (återigen visar färgerna bara olika, delvis replikerade, kromosomer).


Jag tror att figuren har svaret. "Högt kopienummer nära ursprunget". Detta avbildas i grafen av spiken vid x = 4Mbp. Grafen visar också att antalet avläsningar är lägst vid en punkt mitt emot ori (2Mbp).

Mbp står för Mega-baspar, eller 1 miljon nukleotider. Mbp i grafen hänvisar till en punkt på kromosomen, med 4Mbp vid '12 oclock ', replikationens ursprung (ori) och 2Mbp vid' 6 oclock 'mittemot ori. Forskarna mäter antalet DNA-fragment (y-axeln) som kartläggs till en viss position på kromosomen (x-axeln). Jag är lite färgblind, men det verkar som om färgerna i allmänhet stämmer överens. Observera också att avläsningarna som faller inom den nedre delen av parentesen på höger sida av x-axeln sträcker sig över hela x-axeln. Detta beror på att dessa fragment kartläggs helt till kromosomen, och de är faktiskt märkta som "ursprungligt genom".

Hoppas det hjälper.


För det första skulle det hjälpa om du kunde ge mer information om figuren (hur den gjordes, är den databaserad eller representativ för en modell?)

Med tanke på att det är lite att gå på kan jag erbjuda mina två bitar - och jag hoppas att det kommer hjälpa dig att tänka på det - men...

Det verkar för mig att dessa data är en ögonblicksbild av de replikerande bakteriegenom som isolerats från många celler vid en given tidpunkt. Den högra sidan av figuren visar en modell av det (cirkulära) genomet i svart med ett antal mindre fragment av genomet fångat halvvägs genom replikationsprocessen. Den vänstra sidan visar samma fragment utsträckta i en linjär representation.

Det gröna fragmentet är det största eftersom det nästan är klart att kopiera. Andra färger visar fragment av olika storlek vid olika punkter i kopieringsprocessen. Det låter som att grafen är tänkt att relatera antalet fragment av olika storlek till tillväxthastigheten (förutsatt att du mäter fragment från samma antal celler).

Så, vad säger detta dig? (Jag tror att det skulle vara till hjälp för dig att tänka ut detta själv formuläret här och avgöra om du tror att detta är ett bra mått eller inte.)


Definitioner:

Kvantitativ analys
Analys där ett mikrobiellt antal bestäms

Kvalitativ analys
Analys där närvaro eller frånvaro av en organism bestäms

CFUs
Kolonibildande enheter

COA
Analyscertifikat

Denna del är ett representativt prov och kommer att ge ett korrekt och omfattande resultat.

När du rapporterar ett resultat där inga organismer upptäcks dikterar rapporteringsstandarden att du inte kan rapportera noll, men att du måste rapportera & lt1.

Eftersom proverna späds för teständamål måste denna utspädning också beaktas vid rapportering av resultatet. Till exempel, där inga kolonier detekteras i en utspädning av 1:10, skulle resultatet vara lika med <10.

Detta resultat är det lägsta resultat som kan rapporteras där inga organismer detekteras.

Se utdraget från ISO 7218, 'Mikrobiologi av livsmedel och djurfoder - allmänna regler för mikrobiologiska undersökningar':

”9.3.5.3.2 Om de två skålarna i nivå med testprovet (flytande produkter) eller den ursprungliga suspensionen (andra produkter) inte innehåller några kolonier, uttryck resultatet enligt följande:
mindre än 1 mikroorganism per milliliter (flytande produkter)
mindre än 1/d mikroorganismer per gram (andra produkter)
(Där d är utspädningsfaktorn för den initiala suspensionen)”

Dessa resultat indikerar att det mikrobiella antalet nådde testmetodens övre räkningsområde. Räkningarna är TNTC (Too Numerous to Count) och rapporteras därför som mer än (& gt) testets övre räknarområde.

Om räkningar överstiger det rekommenderade räknarintervallet, men kan räknas, kommer resultatet att rapporteras med ett ”E” för att indikera att räkningen ligger utanför det rekommenderade räknarintervallet.

Rapporteringsformatet för resultat dikteras av ISO -standarden 7218, ”Mikrobiologi för livsmedel och djurfoder - allmänna regler för mikrobiologiska undersökningar”.

Denna standard dikterar följande:
I flytande prover är den lägsta detektionsgränsen för frånvaro av tillväxt <1.

När en utspädning av fasta livsmedel görs för att testa provet är den lägsta detektionsgränsen för frånvaro av tillväxt & lt10.

Eftersom en representativ del av ett prov analyseras indikerar resultaten att ingen tillväxt erhölls i den testade provdelen.
Ett resultat av "ingen tillväxt" eller "noll" är därför inte vetenskapligt korrekt eftersom provutspädningen inte rapporteras eller beaktas.

"E" = Uppskattad
De flesta kvantitativa referensmetoder har ett rekommenderat antal rapporterbara resultat. När räkningar utanför detta område rapporteras, indikeras det med symbolen 'E'. Denna räkning representerar de faktiska kolonier som räknas där det slutliga antalet ligger utanför det rekommenderade rapporteringsområdet.

Exempel:
Det räknarbara området för TVC (Total Viable Count) är 30-300 CFU/g per spädning. Resultaten på COA kommer att läsas enligt följande för följande räkningar:
Genomsnittligt antal CFU = 10 - Resultat = 10 E
Genomsnittligt antal CFU = 350 - Resultat = 350 E
(För att underlätta tolkningen har ingen utspädningsfaktor inkluderats i exemplet ovan)

Observera att vi rapporterar alla våra resultat enligt internationell standard, ISO 7218, "Mikrobiologi för livsmedel och djurfoder - allmänna regler för mikrobiologiska undersökningar".

Se punkt 9.3.5.3.1 och 9.3.5.3.2, där följande anges när det gäller beräkning och rapportering av resultat (se nedan):

”9.3.5 Visning av resultat
9.3.5.3 Beräknat antal
9.3.5.3.1 Om de två skålarna, på nivån för testprovet (flytande produkter) eller för den initiala suspensionen (andra produkter), innehåller mindre än 15 kolonier, beräkna det aritmetiska medelvärdet y av kolonierna räknade på två skålar.
Uttryck resultatet på följande sätt:
för flytande produkter: uppskattat antal mikroorganismer per milliliter NE = y
för övriga produkter: uppskattat antal mikroorganismer per gram NE = y/d
(där d är utspädningsfaktorn för den ursprungliga suspensionen). '

9.3.5.3.2 Om de två rätterna på testprovets nivå (flytande produkter) eller den ursprungliga suspensionen (andra produkter) inte innehåller några kolonier, uttryck resultatet enligt följande:
mindre än 1 mikroorganism per milliliter (flytande produkter)
mindre än 1/d mikroorganismer per gram (andra produkter)
(där d är utspädningsfaktorn för den ursprungliga suspensionen). '

Preliminära resultat visar att analyser är klara. De kan också visa resultat som inte har slutförts och som väntar.

Preliminära resultat kan tillhandahållas på begäran av klienten. De kan användas av kunden för att fastställa ytterligare testkrav. De kan användas av laboratoriet för att överföra resultat till klienten innan slutrapporten kan utfärdas.

När preliminära resultat tillhandahålls i form av ett analyscertifikat kommer de inte att undertecknas. En signatur indikerar att resultaten och begäran har verifierats av en teknisk undertecknare och att resultaten är fullständiga.

Vissa referensmetoder föreskriver att prover med presumtivt positiva resultat kräver ytterligare bekräftelse. Bekräftelse är därför en skyldighet att slutföra metoden och rapportera det slutliga resultatet som "positivt" eller "upptäckt".

Resultat som inte har några presumtiva kolonier är fullständiga enligt metoden. Ingen ytterligare bekräftelse kan utföras, och inga ytterligare resultat eller avgifter för bekräftelse behövs därför för dessa prover.

Resultaten och merkostnaden för att utföra bekräftelserna separeras därför.

NR indikerar ett resultat som inte kan rapporteras och kommer att anges i resultatkolumnen i COA. Resultaten kanske inte kan rapporteras av flera skäl.

NR rapporteras när erhållna resultat inte är mikrobiologiskt sunda, till exempel, räkningarna inte ligger inom laboratoriets acceptabla gränser eller livsmedelsmatrisen påverkade testmediet, vilket resulterar i att uppräknade kolonier inte visar typiska bakterieegenskaper eller resultat.

När det gäller NR tas kostnaden för just den analysen bort och det rekommenderas att lämna in det specifika provet igen för analys för att få slutgiltiga resultat.


Omfattning & uppdrag

Gränser i mikrobiologi är en ledande tidskrift inom sitt område, som publicerar rigoröst peer-reviewed forskning över hela spektrat av mikrobiologi. Fältchefredaktör Martin G. Klotz vid Washington State University får stöd av en enastående redaktion av internationella forskare. Denna tvärvetenskapliga journal med öppen åtkomst ligger i framkant när det gäller att sprida och kommunicera vetenskaplig kunskap och effektfulla upptäckter till forskare, akademiker, kliniker och allmänheten över hela världen.

När vi tar mycket bättre hänsyn till den osynliga majoriteten av livet, reda ut de biogeokemiska processerna som mikrober underlättar och därigenom göra planeten Jorden beboelig för alla former av liv när vi alltmer identifierar de regler genom vilka mikroorganismer interagerar med samutvecklande virus och makroorganismer i hälsa och sjukdomar och när vi hittar fler och bättre strategier för att mildra de skadliga effekterna av antropogena aktiviteter på överflöd, mångfald, distribution och aktivitet hos mikrobiella samhällen, Gränser i mikrobiologi kommer att vara 2000 -talets tillvägagångssätt för att kommunicera alla dessa framsteg till både specialisten och en bredare publik av läsare inom området.

Gränser i mikrobiologi är medlem i kommittén för publikationsetik.


Virtuella labb och handel

Detta är beta -programvara. Vi håller fortfarande på att testa och bygga ut dessa labb. Du kommer sannolikt att uppleva buggar, felaktigheter mellan ljud och text, etc. Detta kommer inte nödvändigtvis att återspegla kvaliteten och tillståndet för den slutliga byggnaden.
Om du har frågor eller funderingar, kontakta oss på [email protected]

Använda mikroskopet för videouppspelning

Detta arbete stöddes av USDA CSREES och USDA National Institute of Food and Agriculture under två Higher Education Challenge Grant-projekt: 2008-38411-19055 och 2011-38411-30625. © 2008-2021 NMSUs styrelse. Samarbetande universitet South Dakota State University, North Dakota State University och New Mexico State University är alla arbetsgivare och utbildare för lika möjligheter/bekräftelse.

NMSU diskriminerar inte på grund av ålder, anor, färg, funktionshinder, könsidentitet, genetisk information, nationellt ursprung, ras, religion, vedergällning, allvarligt medicinskt tillstånd, kön (inklusive graviditet), sexuell läggning, äktenskaplig tillhörighet eller skyddad veteranstatus i sina program och verksamheter som krävs av jämställdhetsföreskrifter och lagar och universitetspolicy och regler. För mer information, läs NMSU:s meddelande om icke-diskriminering. (öppnas i nytt fönster)

För webbproblem som stavfel, trasiga länkar eller andra tekniska problem med webbplatsen, kontakta NMSU Innovative Media Research and Extension.


Mikrobiologi okänt labbrapport av Taylor Autry

I den här artikeln kommer jag att diskutera processerna för hur jag hittade mina två okända bakterier. Detta kommer att vara en viktig uppgift att ta med mig in i mitt yrke av många skäl. Inom det medicinska området är bakterier och infektioner av olika slag kärnan i praktiken. Dessa bakterier måste kunna identifieras för att behandla patienter korrekt, effektivt och säkert.


Material och metoder:

Det okända numret 123 som professorn delade ut den 20 mars 2014 innehöll både en grampositiv bakterie och en gramnegativ bakterie. Vid denna tidpunkt omsattes allt som hade lärt sig i mikrobiologilaboratoriet och som hade förklarats i vår labbmanual (1). Det första steget för att ta reda på de okända var att separera de två bakterierna. För att göra detta användes en näringsagarplatta. Stripmetoden användes för att sprida bakterierna över näringsagaren i hopp om att isolera en ren kultur av en av bakterierna. För att göra streckmetoden steriliserades en inokuleringsslinga med en Bunsen -brännare och sattes i det okända provet. Efter avlägsnande med bakterier på öglan användes metoden med kvadrantstreck. Sträckplattan inkuberades sedan vid 37 grader Celsius under 48 timmar. När man återvände och observerade streakplattan fanns det ett överflöd av grönt över plattan. Det var bara en koloni som var uppenbar. Efter observation togs ett prov från den isolerade kolonin på radplattan och en annan radplatta gjordes med det, för att försöka isolera kolonierna ytterligare. Förutom att använda kvadrantmetoden för att ytterligare isolera kolonierna, togs ett prov från den bästa kolonin på den ursprungliga raden och gramfärgades. Gramfärgningsproceduren utfördes enligt anvisningarna i labbmanualen (1). Gramfläcken visade ett resultat av röda, gramnegativa stavar. För att dechiffrera mellan vilka biokemiska tester som ska utföras, hänvisades till de grampositiva och negativa tabellerna som professorn delade ut. Från tidigare biokemiska tester gjorda under terminen, Pseudomonas aeruginosa var redan misstänkt på grund av det gröna pigmentet i den ursprungliga streakplattan. Vid granskning av identifieringstabellerna var det avgörande biokemiska testet Casein -testet som testar för framställning av enzymet för att bryta ner mjölkprotein -kaseinet. Mjölkagaren inkuberades vid 37 grader Celsius i 48 timmar. Efter observation fanns ett tydligt positivt resultat, vilket visade att bakterierna producerade casease. Efter att ha bekräftat de gramnegativa bakterierna började processen att isolera de grampositiva bakterierna. För att återvända till det ursprungliga okända beståndet 123, gjordes en kvadrantstrimplatta med ett steriliserat inokulerande utseende på en mannitolsaltagar, som hämmar tillväxten av gramnegativa bakterier. Denna MSA-platta inkuberades vid 37 grader Celsius under 48 timmar. Vid återkomst och observation gav MSA inte en bra isolerad koloni. Professor Snaric rådde att göra en annan MSA -agar från originalförrådet, men den här gången med en steril pinne istället för en inokuleringsslinga. Detta test inkuberades också vid 37 grader Celsius i 48 timmar och gav en bra isolerad koloni. Ett prov togs från denna koloni och överfördes till en näringsbuljongagar för att ytterligare isolera den. Efter inkubation hade denna näringsagar fantastiska resultat med många isolerade kolonier. Ett prov togs från den isolerade näringsagaren och en gramfärgning gjordes enligt instruktionerna i laboratoriehandboken (1). Gramfläcken visade tydliga lila grampositiva kocker. Efter att ha fått en bra gramfläck hänvisades till identifieringstabellerna för att välja mellan lämpliga biokemiska tester.

Ett nitratprov utfördes för att upptäcka om bakterierna kunde reducera nitrat till nitrat eller någon ytterligare reducerad form. Därefter utfördes ett ureaprov för att kontrollera att ureas produceras. Alla biokemiska tester som utfördes förklarades i laboratoriehandboken från professor (1) och praktiserades tidigare under terminen. Tabellerna 1 och 2 listar testerna, syften, reagenser som används och resultaten av varje test.

Följande tester utfördes på de gramnegativa bakterierna:

Följande tester utfördes på de grampositiva bakterierna:

Det första testet som utfördes på de gramnegativa bakterierna var ett kaseintest. Detta test gav ett positivt resultat som fick en brun färg, vilket betyder att de gramnegativa bakterierna producerade enzymet casease för att bryta ner mjölkproteinet kasein. Detta var det enda testet som var nödvändigt för att bestämma de okända gramnegativa bakterierna i okända stam 123.

Tabell 1: Tester och resultat för gramnegativa bakterier

Det första testet som utfördes på de grampositiva bakterierna var nitrattestet som blev rött efter tillsats av reagenser vilket gav ett positivt resultat vilket betyder att bakterierna reducerade nitrat till nitrit eller något vidare. Efter nitratprovet var Urea -testet för att avgöra om bakterierna producerade ureas. Detta gav ett positivt resultat med en varmrosa buljong, vilket betyder att bakterierna producerade ureas.

Tabell 2: Tester och resultat för grampositiva bakterier


Diskussion/Slutsats

Den okända #123 innehöll två olika prov av bakterier, en var en grampositiv bakterie och en var en gramnegativ bakterie. Den första okända i #123 som visade sig vara en gramnegativ bakterie identifierades som Pseudomonas aeruginosa. Denna identifiering uppnåddes med endast ett biokemiskt test och noggrann observation. En gramfläck gjordes ursprungligen och fann röda stavar som identifierade bakterierna som gramnegativa. Strimplåten som ursprungligen gjordes visade ett tungt grönt pigment, vilket är en huvudkaraktär för Pseudomonas auruginosa. Nästa test som utfördes var ett kaseintest som visade ett tydligt positivt resultat. Den enda gramnegativa bakterien som visar ett positivt resultat på kaseintestet är Pseudomonas aeruginosabekräftar därför korrekt de okända gramnegativa bakterierna.

Den andra okända bakterien identifierades som en grampositiv bakterie med en coccusform. Detta styrde omedelbart två av de grampositiva bakterierna Bacillus cerus och Bacillus subtilis. Detta lämnade tre bakterier som den andra okända kan vara Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, eller Enterococcus faecalis. Nästa test som utfördes var ett nitrattest som gav ett positivt resultat. De två bakterier som ger ett positivt resultat för detta test är Staphylococcus aureus och Staphylococcus epidermidis. Det andra testet som utfördes var ett ureatest som också gav ett klart positivt resultat som bekräftar att okända grampositiva bakterier som Staphylococcus epidermidis eftersom Staphylococcus aureus ger ett negativt resultat. Samråd med professorn, bekräftade de två okända bakterierna korrekt som Pseudomonas aeruginosa och Staphylococcus epidermidis. Det enda problemet som man stötte på dök upp när man försökte isolera de grampositiva bakterierna. De gramnegativa bakterierna i okända #123 är en mycket aggressiv bakterie som försvårar tillväxten av en grampositiv bakterie. Även på en MSA-agar krävdes det några försök och flera isoleringar för att få grampositivt att växa. Efter framgångsrik isolering av båda bakterierna fanns det inga fler problem med att identifiera heller.

Pseudomonas aeruginosa är en gramnegativ stavformad bakterie som först upptäcktes 1882 av en apotekare vid namn Carle Gessard (2). Hans studie plockade upp den unika blågröna pigmenteringen av P. aeruginosa. Denna bakterie kan katalysera i många miljöer vilket gör den mycket vanlig och finns nästan överallt, till exempel jord, vatten, människor, växter, avlopp och sjukhus. P. aeruginosa är vad som kallas en opportunistisk mänsklig patogen, eftersom den sällan påverkar en frisk individ. Denna bakterie påverkar i högre grad individer med nedsatt immunförsvar, de vanligaste är de med cystisk fibros, cancer eller AIDS. (2) Denna speciella bakterie är så farlig och patogen att den infekterar upp till två tredjedelar av kritiskt sjuka patienter på sjukhuset och är en ledande patogen i de flesta vårdcentraler med en dödlighet på 40-60 % (2). Det är farligast för patienter med cystisk fibros och är inblandat och komplicerar 90 % av dödsfallen i cystisk fibros. Det bygger resistens mot många antibiotika och även kemoterapeutiska medel. “P. aeruginosa är en fakultativ aerobe, den föredragna metabolismen är andning. ” (MicrobeWiki) Människor som löper störst risk för infektion av P. aeruginosa är de på sjukhusinställningar, särskilt de på andningsmaskiner eller med katetrar (3). Även om vissa fall har orsakats av simning i pooler eller badtunnor med felaktiga nivåer av klor. För att undvika spridning och kontaminering av P. aeruginosa bör sjuksköterskor och sjukvårdspersonal se till att använda aseptisk teknik eftersom bakterierna oftast sprids genom förorenad utrustning och professionella händer. P. aeruginosa är snabbt på väg att bli resistent mot antibiotika och bli allt svårare att behandla. Att välja rätt antibiotikum för just denna bakterie är särskilt viktigt.


Framtiden

Forskning tyder på att ansträngningar för att göra en renare miljö, fri från bakterier, bidrar till ökningen av fetma, cancer och hjärtsjukdomar. [6] Experter försöker ta reda på hur "probiotika" (livsmedel som yoghurt med aktiva kulturer och kosttillskott som innehåller levande bakterier) kan förbättra vår hälsa. Forskning pågår så att specifika bakterier i framtiden kan ordineras som individuellt anpassade behandlingar för patienter.

Vårt immunsystem behöver rätt kombination av bakterier så att vi kan hålla oss friska och lita mindre på mediciner. Antibiotika är fortfarande ett kraftfullt verktyg för att hålla oss friska men bör inte användas när de inte behövs. Ju mer vi lär oss, desto mer uppskattar vi kraften hos insekterna inom oss – att läka och inte bara göra skada.

Alla NCHR -artiklar granskas och godkänns av Dr Diana Zuckerman och annan högre personal.


Positiv kontroll: Clostridium perfringens (ATCC 13124)
Negativ kontroll: Escherichia coli (ATCC 25922)

  1. Collin County Community College District
  2. Portland Community College
  3. ASM Microbe Library: Endospore Stain Protocol
  4. Austin Community College
  5. Western Michigan University
  6. Sigma-Aldrich Chemie GmbH
  7. Bacteriological Analytical Manual 8:e upplagan, Revision A (1998)
  8. H.J. Conn’s Biological Stains, 9: e upplagan. av R.D. Lillie (1977)
  9. Hösten 2011, Jackie Reynolds, Richland College, BIOL 2421
  10. Microbe online
  11. Wikipedia

3 tankar om & ldquo Endospore-färgning- princip, reagenser, procedur och resultat & rdquo

Hur liknar denna färgningsprocedur teknik som sporer färgning?

Jag går för närvarande en mikrobiologikurs på den lokala community college. Jag har en okänd som bara min professor känner till. Jag utförde 3 färgningsprocedurer och fastställde att min okända är grampositiva kocker, icke-syrafasta, endosporbildare. Jag trodde att det kan vara en Mycobacterium. Stämmer det utifrån informationen jag gav? Eller behövs mer information?

Hej Sagar Aryal,
Jag har ett tvivel….
Innan jag utför endosporfärgning tror jag att jag behöver att bakterierna är i endosporfas…. Hur gör jag det?


Behörighet & amp Tillträde

Du kan ta antagning till kandidatkurser efter godkänd 12: e klass med PCB ämnen. Vissa högskolor anser 50% betyg i PCB -ämnen.

För tillträde till PG-kurser är det nödvändigt att hålla en kandidatexamen (B.Sc.) i det relaterade fältet. Vissa universitet organiserar sina egna inträdesprov för screening av kandidater för antagning. Kandidater kan visas i NEET PG 2021, AIIMS PG 2021 och JIPMER PG 2021 för mikrobiologikurser.

De bästa högskolorna att bedriva mikrobiologi är:

  • Amity University
  • Bharath University, Chennai
  • Devi Ahilya Vishwavidyalaya
  • Jiwaji University, Science and Faculty of Life Sciences
  • Delhi University
  • Christian Medical College, Vellore

Färdigheter som krävs för en mikrobiolog:

  • Tydligt och logiskt tänkande
  • Goda problemlösningskunskaper
  • Lagledarförmåga
  • Bra skriv- och kommunikationsförmåga
  • Utmärkt nivå av noggrannhet
  • Möjlighet att arbeta med statistik och relevanta datapaket.

Få ett meddelande när vi har nyheter, kurser eller evenemang av intresse för dig.

Genom att ange din e-postadress samtycker du till att ta emot kommunikation från Penn State Extension. Se vår integritetspolicy.

Tack för ditt bidrag!

Hantera din brunn under torka

Artiklar

Vattentester: Vad betyder siffrorna?

Guider och publikationer

Lösa bakterieproblem i brunnar och källor

videoklipp

Förvaltning av privata brunnar och vattensystem

Onlinekurser

Tolkning av dricksvattentester för mjölkkor

Artiklar

Samarbete i mikrobiella samhällen och deras biotekniska tillämpningar

Mikrobiella samhällen används allt mer inom bioteknik. Effektivitet och produktivitet i många av dessa applikationer beror på närvaron av samarbetsinteraktioner mellan medlemmar i samhället. Två nyckelprocesser som ligger till grund för dessa interaktioner är produktionen av kollektiva nyttigheter och metabolisk korsmatning, vilket kan förstås inom den allmänna ramen för ekologisk och evolutionär (eko-evo) dynamik. I denna översyn illustrerar vi relevansen av kooperativa interaktioner i mikrobiella biotekniska processer, diskuterar deras mekanistiska ursprung och analyserar deras evolutionära motståndskraft. Kooperativa beteenden kan skadas av uppkomsten av "fuskceller" som drar nytta av de kooperativa interaktionerna men som inte bidrar till dem. Trots detta kan kooperativa interaktioner stabiliseras genom rumslig segregering, genom närvaro av återkopplingar mellan den evolutionära dynamiken och gemenskapens ekologi, genom rollen av regleringssystem kopplade till miljöförhållandena och genom verkan av horisontell genöverföring. Samarbetsinteraktioner berikar mikrobiella samhällen med en högre grad av robusthet mot miljöstress och kan underlätta utvecklingen av mer komplexa egenskaper. Därför bör den evolutionära motståndskraften hos mikrobiella samhällen och deras förmåga att begränsa skadliga mutanter övervägas för att designa robusta biotekniska tillämpningar.


Titta på videon: Kelompok 3Aplikasi Mikrobiologi pada Bidang Pertanian (Februari 2023).