Information

Vid mognad mot växt: vilken ger en mer näringsrik frukt?

Vid mognad mot växt: vilken ger en mer näringsrik frukt?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Många frukter kan mogna antingen när de är fästa vid växten eller när de lossnar från växten. Vilket alternativ ger en mer näringsrik frukt? Med andra ord, om man plockar en frukt när den fortfarande är omogen och väntar på att den ska bli mogen, kommer frukten att ha liknande näringsegenskaper som om man väntar på att frukten ska mogna innan man plockar den?


Finns det någon näringsmässig skillnad mellan frukt mognad på plantan och frukt som mognar på hyllan hos mataffären?

Mycket frukt plockas från växten i "rå" tillstånd, som bananer, tomater och avokado.

Får frukten mycket näringsvärde om den mognar medan den fortfarande är fäst vid växten?

Skulle en omogen frukt som mognar på hyllan hos din lokala livsmedelsbutik ha lika mycket näringsämnen som en som mognar medan den fortfarande är fäst vid sin växt?

Lite grundläggande växtbio vid mognad:

För de flesta frukter styrs mognadsprocessen av växthormonet eten. Detta är en gas som produceras i frukten för att framkalla mognad, men är också en spridbar signal som kan verka över avstånd. Till exempel i vissa arter, om du lägger mogen frukt med omogen frukt, kommer den mogna frukten att producera eten som får närliggande frukt att mogna.

Den första kommersiella GMO:n var flavr-savr-tomaten, som är en antisens-RNA-konstruktion som stör etenproduktionen. Genom att förhindra att tomaterna gör sin egen eten kan du kontrollera mognadsprocessen genom att tillsätta eten när du vill. Flavr-savr misslyckades eftersom den utvecklades i en sort som inte lämpade sig för kommersiell produktion. Minskad etenproduktion har sedan dess förädlats till de flesta kommersiella sorter.

Näringsförändringar vid mognad är mycket komplexa och beror på ett antal faktorer, inklusive ljus och temperatur. Det är viktigt att inse att detta sker i den mogna fruktvävnaden, och mycket liten floemaktivitet förekommer i en mogen frukt som kan mogna av växten. Även om den mogna vävnaden kanske inte växer, fungerar den fortfarande biokemiskt.

Jag kunde inte hitta något som direkt tog upp frågan om mognad mot växt, men min inställning är att denna skillnad är minimal jämfört med andra faktorer. Fruktens ålder, och förhållandena den hölls i (ljus, temp.), och framför allt växtförhållandena och variationen av plantan, kommer att spela de största rollerna. Om jag ville leta efter näringsmässiga skillnader, skulle jag fokusera mitt sökande på att titta på olika sorter, inte på mognadsregimen.

Med hjälp av tomater samlar frukt som mognat på växten nästan alla sockerarter och många av flavonoiderna under de senaste 3 dagarna på vinstocken. Så när någon frågar om näringen finns så frågar jag om smaken finns för när smaken finns blir näringen optimal.

Varning att det går mycket mer åt att producera en enastående god smaksatt tomat än bara mognadsprocessen. Det finns en enorm genetisk komponent, markens näringsstatus och skadedjurs-/sjukdomstryck att ta hänsyn till. Kommersiella tomater utvecklades för att vara hårda bowlingklot, enhetlig storlek, mycket produktiva och en massa andra egenskaper som är förknippade med att frakta dem 2000 miles innan de placeras i en etenkammare för att mogna. Var fanns smaken i något av detta?

Bakgrund, jag producerar grönsaksplantor för att leva och är en tomatkritiker för ett tidsfördriv. http://www.selectedplants.com/culture.htm och läs de sista artiklarna.

Edit: Bananer lider inte så mycket smak- och näringsförluster av att de mognar från växten. Tomater å andra sidan när kraftmogna förlorar en enorm mängd karotenoider, flavonoider och flyktiga ämnen som avsevärt minskar näringsinnehållet och smaken. Om du vill spendera en eftermiddag med att läsa intressant forskning, slå upp "Klee tomatsmak". Harry försöker åtminstone föda upp en bättre tomat, även om jag inte är säker på att han kan lyckas med tanke på bowlingklotsgenetiken hos de flesta kommersiella tomater.

Det sista stycket var mycket upplysande. Jag fick intrycket att många frukter som fortfarande är "på vinstocken" fortfarande har massor av näringsämnen och socker som transporteras till sig genom floemet och när den plockas tappar den den kapaciteten och smakar därför inte lika bra.

Jag vet att när det gäller vissa frukter, särskilt ananas, kommer ingen mognad att ske utanför växten. Hur söt eller mogen frukten än är när den plockas är därför den bästa den kommer att bli.

Enligt artikeln konstruerades flavr-savr för att inte producera polygalakturonas, som bryter ned pektin i cellväggarna och resulterar i att tomaten mjuknar.

Normalt skulle tomater skördas innan de mognar, eftersom de skulle vara för mjuka om de fick mogna.

Det skulle också bero på den exakta typen av mognad. Vissa växter lagrar stärkelse i den omogna frukten, och mognadsprocessen förvandlar stärkelsen till socker, andra lagrar sockret på annat håll och rör in det i frukten. Således kan den första typen av frukt sötas efter att ha plockats och den andra inte. Ananas, till exempel, blir inte sötare efter plockning eftersom de är avskurna från sockret i roten.

Inget av detta gäller andra aspekter av mognad som smakföreningar, cellväggsnedbrytning eller syraminskning.

Inte mitt område, men ingen har tagit steget upp med verklig vetenskap, så här är två källor som jag kunde hitta som tyder på att skillnader förekommer mellan mognad på plantan och efter skörd, en som visar en skillnad i antioxidantkoncentration och en annan visar en mer generell skillnad (eller brist på) mellan mognad på trädet och efter skörd:

Källa 1 (länk nedan) " Uppgifterna indikerar att mognadsförhållandena påverkade både antioxidantackumuleringskinetiken och det slutliga innehållet, som var högre i efter skörden mognad frukt."

Källa 2 " Det är en vanlig observation att frukter av många arter mognar snabbt om de skördas men långsammare eller inte alls om de lämnas på trädet. Ett extremfall av detta beteende är Fuerte-avokado (odlad i södra Kalifornien) som inte kommer att mjukna när den är fäst vid trädet med en frisk stjälk."

*Jag skulle vilja be om ursäkt för eventuell felaktig information som jag kan ha gett. Jag ville dra tillbaka mitt inlägg tills jag har lite tid på mig att skriva ett grundligt, kortfattat svar som förklarar mina tidigare inläggs länkar och påståenden. Jag uppmuntrar dig att läsa några av de andra inläggen nedan som alla har relevant information men jag tror inte att du har besvarat frågan fullt ut. Jag har en tendens att inte helt förklara vad jag har tillhandahållit. Så jag uppmuntrar var och en av er att rösta ner mitt svar tills det förklaras i detalj.

Jag har lämnat en resurs som faktiskt visar att det finns en statistiskt signifikant skillnad mellan en tomat som mognat på plantan och den utanför vinrankan när man tittar på några specifika kriterier. (Notera nivån av askorbinsyra i tabell 1).

Dessutom har jag lämnat en annan källa som visar liknande fynd som illustrerar en skillnad. (Observera nivån av askorbinsyra) i tabell 6. Förutom att påpeka i slutsatserna att mer forskning behöver göras för att se vilken, om någon, skillnad det faktiskt kan vara.

Dessa två studier visar dock olika fynd av en av samma testade variabler (nivåer av askorbinsyra). Den första har ingen signifikant förändring i askorbinsyra medan den andra gör det. Det finns metodskillnader mellan de två studierna som kan förklara det. Den första studien påpekar också skillnaderna (som vissa har nämnt) upp till 30% jämfört med den mognade vinstocken jämfört med inte med avseende på 4 av deras forskningspoäng.

I grunden av detta. Ja, det finns en mätbar näringsskillnad mellan de två när man tittar på DETTA ENDA föremålet, en tomat och de specifika näringsämnen som testats. Frågan som är kärnan i mitt ursprungliga uttalande om (nej, det finns inte mycket). är att den näringsmässiga skillnaden skulle vara så liten att den inte skulle göra någon skillnad i schemat för en individs näringsmässiga välbefinnande.

Detta är en fråga om hur man skulle tolka betydelsen av frasen "näringsskillnad" och vad den syftar på. Så jag ber om ursäkt för det. Jag kommer dock att ta upp de farhågor som framförts. Jag skulle vilja säga att eftersom tomatfynden är olika betyder det inte nödvändigtvis att detta skulle gälla alla frukter.

Jag undervisar inte i kost men jag skulle vilja utveckla detta. Jag håller med om att jag inte har hört något där själva mognadsprocessen spelar roll.

Det jag har sett är rapporter om näringsförlust över tid sedan skörden. Detta är en rapport som jag kunde hitta med en snabb sökning. Intrycket jag fick var att detta totalt sett inte är väl studerat och att de flesta matlagringsvetenskap kretsar kring livsmedelssäkerhet istället.

Hur detta gäller din fråga är om två fruktbitar med likvärdig mognad presenteras för dig i mataffären, och en har mognat på plantan och en mognat på hyllan, kan man kanske dra slutsatsen att den ena mognat på växten plockades mer nyligen och hade därför mindre tid för näringsprofilen att sönderfalla.

Ingen av dessa 5 källor stödjer dina påståenden. Jag har precis läst alla fem. Två tar inte ens upp frågan, och de andra tre (varav en endast handlar om samoanska frukter som äts av flygande rävar) motsäger dig alla. Jag inbjuder dig att posta källor som stödjer dina påståenden, annars kanske du vill redigera ditt inlägg eller så kan det raderas för att det motsägs av dess egna källor.

Uppdelningen av dina citat:

Första referens - tar inte upp näringsinnehållet i frukten alls diskuterar bara utseende och smak.

Andra referensen - handlar egentligen om flygande rävar, men trots det fann de uppgifter de presenterar om omogen kontra mogen frukt som äts av flygande rävar en skillnad: omogen frukt har mindre järn och mer kalcium än mogen frukt. Ingen av de fem studerade växtarterna är kommersiellt odlade av människor, alla är vilda samoanska arter som äts av fruktfladdermöss.

3:e ref - Detta papper handlar om tomater. Sammanfattningen säger: "Tomater som mognat på vinstocken hade betydligt mer lykopen, betakaroten, lösliga och totala fasta ämnen" (det vill säga - 4 av de 5 undersökta näringskomponenterna). När man tittar på deras tabell är det tydligt att skillnaderna mellan lykopen och betakaroten är ganska stora, ca 33% högre i den vinmognade frukten.

4:e ref - Den här handlar om C-vitamin och motsäger dig helt. Den långa diskussionen som börjar på sidan 211 gör klart att skördetidpunkten avsevärt påverkar vitamin C-koncentrationen i en mängd olika frukter och grönsaker. Till exempel: " Mognad vid skörd, skördemetod och hanteringsförhållanden efter skörd påverkar också C-vitaminhalten i frukt och grönsaker (Kader, 1988). Mognad är en av de viktigaste faktorerna som bestämmer sammansättningskvaliteten hos frukt och grönsaker. Tomatfrukt skördad grön och mognad vid 20°C till bordsmognad innehöll mindre AA [askorbinsyra, vitamin C] än de som skördades vid bordsmogna stadiet (Kader et al., 1977). Betancourt et al. (1977) rapporterade också att tomatfrukter som analyserades i "brytningsstadiet" endast innehöll 69 % av deras potentiella AA-koncentration om de mognade på vinstocken till bordsmogna. Frukt samlade AA under mognad på eller utanför plantan, men ökningen var mycket större för de frukter som fanns kvar på plantan."

5:e ref - Den här referensen tar bara upp ekologiska kontra icke-organiska livsmedel så vitt jag kan säga att det inte finns något i den om vinmognad kontra lagringsmogna frukter.


Få ett meddelande när vi har nyheter, kurser eller evenemang av intresse för dig.

Genom att ange din e-postadress samtycker du till att ta emot kommunikation från Penn State Extension. Se vår integritetspolicy.

Tack för ditt bidrag!

Serbisk gran - Picea omorika

Artiklar

Fruktproduktion för hemträdgårdsmästaren

Guider och publikationer

Anläggning av hemmamarkerna

Guider och publikationer

2019 Penn State Flower Trials

videoklipp

Växtlivscykler

Artiklar

Könsbyte

Intressant nog kan en manlig persimmon få en "könsbyte" och få frukt. Ympning är biljetten. Under vintern klipps "scion"-ved av en känd hona och ympas på en hanplanta. Därefter undertrycks all tillväxt från den manliga basen och det kvinnliga transplantatet tillåts bli dominant. Resultatet är ett träd med manliga rötter och en honkrona som bär persimonfrukt. Det är faktiskt inte så svårt att göra detta. Du hittar instruktioner för persimmontransplantation här.


Skördade rötter

Välj knölar som är runda, välformade och fria från ärr, sprickor, blåmärken eller repor. Avvisa alla med mörka eller mjuka fläckar, vilket indikerar möjlig bakterie- eller svampinfektion.

Lyft knölen i händerna för att bedöma hur tung den är. Den bör ha rikligt med vatten för saftigt, knaprigt kött. Passera över knölar med indikationer på minskat inre vatten, som de som har ett skrynkligt eller mjukt utseende.

Känn på skalet med fingrarna för att se hur fast frukten är och för att bedöma hur hårt skalet är. Avvisa frukter som har mjukt skal eller som inte är len och fast.

Skala jicamaen med en vass kniv om den lätt skalar, den är mogen och redo att ätas.


Adams DO, Yang SF (1979) Etylenbiosyntes: identifiering av 1-aminocyklopropan-1-karboxylsyra som en mellanprodukt vid omvandlingen av metionin till eten. Proc Natl Acad Sci USA 76:170–174

Adams-Phillips L, Barry C, Kannan P, Leclercq J, Bouzayen M, Giovannoni J (2004) Bevis för att CTR1-medierad etensignaltransduktion i tomat kodas av en multigenfamilj vars medlemmar uppvisar distinkta regulatoriska egenskaper. Plant Mol Biol 54:387-404

Adato A, Mandel T, Mintz-Oron S, Venger I, Levy D, Yativ M, Dominguez E, Wang Z, De Vos RCH, Jetter R, Schreiber L, Heredia A, Rogachev I, Aharoni A (2009) Fruit-surface flavonoidansamling i tomat kontrolleras av en SlMYB12-reglerat transkriptionsnätverk. PLoS Genet 5:e1000777

Alba R, Payton P, Fei Z, McQuinn R, Debbie P, Martin GB, Tanksley SD, Giovannoni JJ (2005) Transkriptom och utvalda metabolitanalyser avslöjar flera punkter för etenkontroll under tomatfruktutveckling. Plant Cell 17:2954–2965

Atkinson RG, Bolitho KM, Wright MA, Iturriagagoitia-Bueno T, Reid SJ, Ross GS (1998) Apple ACC-oxidas och polygalacturonas: mognadsspecifikt genuttryck och promotoranalys i transgen tomat. Plant Mol Biol 38:449-460

Atkinson RG, Gunaseelan K, Wang MY, Luo L, Wang T, Norling CL, Johnston SL, Maddumage R, Schröder R, Schaffer RJ (2011) Dissekering av klimatetens roll i kiwifrukter (Actinidia chinensis) mognad med användning av en 1-aminocyklopropan-1-karboxylsyraoxidas knockdown-linje. J Exp Bot 62:3821–3835

Ayub R, Guis M, Ben Amor M, Gillot L, Roustan JP, Latché A, Bouzayen M, Pech JC (1996) Uttryck av ACC-oxidas-antisensgenen hämmar mognad av cantaloupemelonfrukter. Nat Biotechnol 14:862–866

Baldwin EA, Scott JW, Shewmaker CK, Schuch W (2000) Smaktrivia och tomatarom: biokemi och möjliga mekanismer för kontroll av viktiga aromkomponenter. HortScience 35:1013–1022

Ballester AR, Molthoff J, de Vos R, Hekkert BT, Orzaez D, Fernández-Moreno JP, Tripodi P, Grandillo S, Martin C, Heldens J, Ykema M, Granell A, Bovy A (2010) Biokemisk och molekylär analys av rosa tomater: avreglerat uttryck av genen som kodar för transkriptionsfaktor SlMYB12 leder till rosa tomatfruktfärg. Plant Physiol 152:71–84

Bapat VA, Trivedi PK, Ghosh A, Sane VA, Ganapathi TR, Nath P (2010) Mognad av köttig frukt: molekylär insikt och etylens roll. Biotechnol Adv 28:94–107

Barry CS, Giovannoni JJ (2006) Mognad i tomaten grön-mogen mutant hämmas av ektopiskt uttryck av ett protein som stör etylensignalering. Proc Natl Acad Sci USA 103:7923–7928

Barry CS, Blume B, Bouzayen M, Cooper W, Hamilton AJ, Grierson D (1996) Differentiellt uttryck av 1-aminocyklopropan-1-karboxylatoxidasgenfamiljen av tomat. Anläggning J 9:525–535

Barry CS, McQuinn RP, Thompson AJ, Seymour GB, Grierson D, Giovannoni JJ (2005) Etenokänslighet tillförd av Grön-mogen och Aldrig-mogen 2 mogna mutanter av tomat. Plant Physiol 138:267–275

Barry C, McQuinn R, Chung M, Besuden A, Giovannoni J (2008) Aminosyrasubstitutioner i homologer av STAY-GREEN (SGR)-proteinet är ansvariga för mutationerna i grönt kött och klorofyll i tomat och peppar. Plant Physiol 147:179–187

Barry CS, Aldridge GM, Herzog G, Ma Q, McQuinn RP, Hirschberg J, Giovannoni JJ (2012) Förändrad kloroplastutveckling och försenad fruktmognad orsakad av mutationer i ett zinkmetalloproteas vid lutescent2 locus av tomat. Plant Physiol 159:1086–1098

Belding RD, Blankenship SM, Young E, Leidy RB (1998) Sammansättning och variabilitet av epikutikulära vaxer i äppelsorter. J American Society for Hort Sci 123:348–356

Bemer M, Karlova R, Ballester AR, Tikunov YM, Bovy AG, Wolters-Arts M, Rossetto Pde B, Angenent GC, de Maagd RA (2012) Tomaten FRUKTIG homologer TDR4/FUL1 och MBP7/FUL2 reglera etenoberoende aspekter av fruktmognad. Plant Cell 24:4437–4451

Blackman FF, Parija P (1928) Analytiska studier i växtrespiration. I. Andningen av en population av åldrande mogna äpplen. Proc R Soc (Lond) B 103:412–445

Borovsky Y, Paran I (2008) Klorofyllnedbrytning under mognad av pepparfrukt i klorofyllretainer-mutationen försämras vid homologen av den åldrande-inducerbara stay-green-genen. Theor Appl Genet 117:235–240

Broun P (2005) Transkriptionskontroll av flavonoidbiosyntes: ett komplext nätverk av konserverade regulatorer involverade i flera aspekter av differentiering i Arabidopsis. Curr Op Plant Biol 8:272–279

Brummell DA (2006) Cellväggsdemontering i mognad frukt. Funct Plant Bio 33:103–119

Brummell DA, Harpster MH (2001) Cellväggsmetabolism i fruktmjukning och kvalitet och dess manipulation i transgena växter. Plant Mol Biol 47:311-340

Brummell DA, Harpster MH, Civello PM, Palys JM, Bennett AB, Dunsmuir P ​​(1999) Modifiering av expansinproteinöverflöd i tomatfrukt förändrar mjukgöring och cellväggspolymermetabolism under mognad. Plant Cell 11:2203–2216

Buchanan-Wolaston V (2007) Åldrande i växter. eLS. doi:10.1002/9780470015902.a0020133

Butelli E, Titta L, Giorgio M, Mock HP, Matros A, Peterek S, Schijlen EG, Hall RD, Bovy AG, Luo J, Martin C (2008) Anrikning av tomatfrukt med hälsofrämjande antocyaniner genom uttryck av utvalda transkriptionsfaktorer . Nat Biotechnol 26:1301-1308

Buttery RG (1993) Kvantitativa och sensoriska aspekter av smak av tomat och andra grönsaker och frukter. I: Acree TE, Teranishshi R (red) Smakvetenskap: förnuftiga principer och tekniker. American Chemical Society, Washington, DC, s 259–286

Buttery RG, Ling LC (1993) Flyktiga komponenter i tomatfrukt och växtdelar: relation och biogenes. ACS Symp Ser 525:23–34

Carpita NC, Gibeaut DM (1993) Strukturella modeller av primära cellväggar i blommande växter: överensstämmelse av molekylär struktur med de fysiska egenskaperna hos väggarna under tillväxt. Plant J 3:1–30

Cevik V, Ryder CD, Popovich A, Manning K, King GJ, Seymour GB (2010) En FRUITFULL-liknande gen är associerad med genetisk variation för fruktköttets fasthet i äpple (Malus domestica Borkh.). Tree Genet Genomes 6:271–279

Chen YF, Randlett MD, Findell JL, Schaller GE (2002) Lokalisering av etylenreceptorn ETR1 till endoplasmatiska retikulum av Arabidopsis. J Biol Chem 277:19861-19866

Chen G, Hackett R, Walker D, Talor A, Lin Z, Grierson D (2004) Identifiering av en specifik isoform av tomatlipoxygenas (TomloxC) involverad i genereringen av fettsyrahärledda smakföreningar. Plant Physiol 136:2641–2651

Che-Radziah CMZ, Nurul-Shahnadz AH, Nairatul-Ain AN, Zainal Z (2011) Genetisk transformation av antisens ACC-oxidas i Carica papaya L. cv Sekaki via partikelbombardement. Malays Appl Biol 40:39–45

Chung M, Vrebalov J, Alba R, Lee J, McQuinn R, Chung JD, Klein P, Giovannoni J (2010) A tomat (Solanum lycopersicum) APETALA2/ERF gen, SlAP2a, är en negativ regulator av fruktmognad. Plant J 64:936–947

Cin V, Tieman DM, Tohge T, McQuinn R, de Vos RC, Osorio S, Schmelz EA, Taylor MG, Smits-Kroon MT, Schuurink RC, Haring MA, Giovannoni J, Fernie AR, Klee HJ (2010) Identifiering av gener i fenylalanins metaboliska väg genom ektopiskt uttryck av en MYB-transkriptionsfaktor i tomatfrukt. Plant Cell 23:2738–2753

Cunningham FX Jr, Pogson B, Sun Z, McDonald KA, DellaPenna D, Gantt E (1996) Funktionsanalys av b- och e-lykopencyklasenzymer av Arabidopsis avslöjar en mekanism för kontroll av cyklisk karotenoidbildning. Plant Cell 8:1613–1626

Davidovich-Rikanati R, Sitrit Y, Tadmor Y, Iijima Y, Bilenko N, Bar E, Carmona B, Fallik E, Dudai N, Simon JE, Pichersky E, Lewinsohn E (2007) Anrikning av tomatsmak genom avledning av den tidiga plastidialen terpenoid väg. Nat Biotech 25:899–901

DeFillipi BG, Manriquez D, Luengwilai K, Gonzalez-Aguero M (2009) Aromflyktiga ämnen: biosyntes och mekanismer för modulering under fruktmognad. Adv Bot Res 50:1–37

Dong H, Deng Y, Mu J, Lu Q, Wang Y, Xu Y, Chu C, Chong K, Lu C, Zuo J (2007) Arabidopsis Spontan celldöd1 genen, som kodar för ett z-karotendesaturas som är väsentligt för karotenoidbiosyntes, är involverad i kloroplastutveckling, fotoskydd och retrograd signalering. Nat Cell Res 17:458–470

Egea I, Barsan C, Bian W, Purgatto E, Latche A, Chervin C, Bouzayen M, Pech J-C (2010) Kromoplastdifferentiering: nuvarande status och perspektiv. Plant Cell Physiol 51:1601–1611

Elitzur T, Vrebalov J, Giovannoni JJ, Goldschmidt EE, Friedman H (2010) Regleringen av MADS-box-genuttryck under mognad av banan och deras reglerande interaktion med eten. J Exp Bot 61:1523–1535

Espley RV, Hellens RP, Putterill J, Stevenson DE, Kutty-Amma S, Allan AC (2007) Röd färgning i äppelfrukt beror på aktiviteten hos MYB-transkriptionsfaktorn, MdMYB10. Plant J 49:414–427

Espley RV, Brendolise C, Chagne D, Kutty-Amma S, Green S, Volz R, Putterill J, Schouten HJ, Gardiner SE, Hellens RP, Allan AC (2009) Flera upprepningar av ett promotorsegment orsakar transkriptionsfaktor autoreglering i röda äpplen . Plant Cell 21:168–183

Fray RG, Grierson D (1993) Identifiering och genetisk analys av normala och muterade fytoensyntasgener av tomat genom sekvensering, komplementering och co-suppression. Plant Mol Biol 22:589-602

Fujisawa M, Nakano T, Ito Y (2011) Identifiering av potentiella målgener för tomatfruktmognadsregulatorn RIN genom kromatinimmunutfällning. BMC Plant Biol 11:26

Gagne JM, Smalle J, Gingerich DJ, Walker JM, Yoo SD, Yanagisawa S, Vierstra RD (2004) Arabidopsis EIN3-bindande F-box 1 och 2 bildar ubiquitin-proteinligaser som undertrycker etylenverkan och främjar tillväxt genom att styra EIN3-nedbrytning. Proc Natl Acad Sci USA 101:6803–6808

Galpaz N, Ronen G, Khalfa Z, Zamir D, Hirschberg J (2006) En kromoplastspecifik karotenoidbiosyntesväg avslöjas genom kloning av tomaten vit-blomma ställe. Plant Cell 18:1947–1960

Gan S, Amasino RM (1995) Inhibering av bladåldring genom autoreglerad produktion av cytokinin. Science 270:1986–1988

Garcia-Limones C, Schnabele K, Blanco-Portales R, Bellido ML, Caballero JL, Schwab W, Munoz-Blanco J (2008) Funktionell karakterisering av FaCCD1: ett karotenoidklyvningsdioxygenas från jordgubbar som är involverat i luteinnedbrytning under fruktmognad. J Agric Food Chem 56:9277-9285

Giovannoni JJ (2007) Fruktmognadsmutanter ger insikter om mognadskontroll. Curr Opin Plant Biol 10:283–289

Giovannoni JJ, DellaPenna D, Bennett AB, Fischer RL (1989) Uttryck av en chimär polygalakturonasgen i transgena rin (mognadshämmare) tomatfrukt resulterar i polyuronidnedbrytning men inte fruktmjukning. Plant Cell 1:53–63

Girard AL, Mounet F, Lemaire-Chamley M, Gaillard C, Elmorjani K, Vivancos J, Runavot J-L, Quemener B, Petit J, Germain V, Rothan C, Marion D, Bakan B (2012) Tomato GDSL1 krävs för cutinavsättning i fruktens nagelband. Plant Cell 24:3106–3121

Goulao LF, Oliveira CM (2007) Cellväggsmodifieringar under fruktmognad: när en frukt inte är frukten. Trender Food Sci Technol 19:4–25

Goulet C, Mageroy MH, Lam N, Floystad A, Tieman DM, Klee HJ (2012) Rollen av en esteras i smakflyktiga variationer inom tomatkladden. Proc Natl Acad Sci USA 109:19009–19014

Guo H, Ecker JR (2003) Växtsvar på etylengas förmedlas av SCF (EBF1/EBF2)-beroende proteolys av EIN3-transkriptionsfaktor. Cell 115:667–677

Guo Y, Gan S (2006) AtNAP, en transkriptionsfaktor i NAC-familjen, har en viktig roll vid åldrande av blad. Anläggning J 46:601–612

Hamilton AJ, Lycett GW, Grierson D (1990) Antisens-gen som hämmar syntesen av hormonet etylen i transgena växter. Nature 346:284–287

Hancock RD, Viola R (2005) Biosyntes och katabolism av L-askorbinsyra i växter. Crit Rev Plant Sci 24:167–188

Hileman L, Sundstrom J, Litt A, Chen M, Shumba T, Irish V (2006) Molekylära och fylogenetiska analyser av MADS-box-genfamiljen i tomat. Mol Biol Evol 23:2245-2258

Hirschberg J (2001) Karotenoidbiosyntes i blommande växter. Curr Opin Plant Biol 4:210–218

Hovav R, Chehanovsky N, Moy M, Jetter R, Schaffer AA (2007) Identifieringen av en gen (Cwp1), tystad under Solanum-evolutionen, som orsakar mikrofissurering och uttorkning av nagelbanden när den uttrycks i tomatfrukt. Plant J 52:627–639

Ioannidi E, Kalamaki MS, Engineer C, Pateraki I, Alexandrou D, Mellidou I, Giovannoni JJ, Kanellis AK (2009) Expressionsprofilering av askorbinsyrarelaterade gener under tomatfruktutveckling och -mognad och som svar på stressförhållanden. J Exp Bot 60:663–678

Isaacson T, Ronen G, Zamir D, Hirschberg J (2002) Kloning av mandarin från tomat avslöjar ett karotenoidisomeras som är nödvändigt för produktionen av b-karoten och xantofyller i växter. Plant Cell 14:333–342

Isaacson T, Kosma DK, Matas AJ, Buda GJ, He Y, Yu B, Pravitasari A, Batteas JD, Stark RE, Jenks MA, Rose JKC (2009) Kutinbrist i tomatfruktnagelbandet påverkar konsekvent motståndskraften mot mikrobiell infektion och biomekanisk egenskaper, men inte transpirationell vattenförlust. Plant J 60:363–377

Itai A, Ishihara K, Bewley JD (2003) Karakterisering av uttryck och kloning av beta-D-xylosidas och alfa-L-arabinofuranosidas i utvecklande och mogna tomater (Lycopersicon esculentum Mill.) frukt. J Exp Bot 54:2615–2622

Itkin M, Seybold H, Breitel D, Rogachev I, Meir S, Aharoni A (2009) TOMATSAMMA-GILLA 1 är en del av det reglerande nätverket för fruktmogning. Anläggning J 60:1081–1095

Ito Y, Kitagawa M, Ihashi N, Yabe K, Kimbara J, Yasuda J, Ito H, Inakuma T, Hiroi S, Kasumi T (2008) DNA-bindningsspecificitet, transkriptionell aktiveringspotential och rin mutationseffekt för tomatfruktmognadsregulatorn RIN. Plant J 55:212–223

Jaakola L, Poole M, Jones MO, Kämäräinen-Karppinen T, Koskimäki JJ, Hohtola A, Häggman H, Fraser PD, Manning K, King GJ, Thomson H, Seymour GB (2010) A SQUAMOSA MADS låda gen involverad i regleringen av antocyaninackumulering i blåbärsfrukter. Plant Physiol 153:1619–1629

Kamiyoshihara Y, Tieman DM, Huber DJ, Klee HJ (2012) Ligand-inducerade förändringar i fosforyleringstillståndet av etenreceptorer i tomatfrukt. Plant Physiol 160:488–497

Karlova R, Rosin FM, Busscher-Lange J, Parapunova V, Do PT, Fernie AR, Fraser PD, Baxter C, Angenent GC, de Maagd RA (2011) Transkriptom- och metabolitprofilering visar att APETALA2a är en viktig regulator av tomatfruktmognad. Plant Cell 23:923–941

Kerstiens G (1996) Kutikulär vattenpermeabilitet och dess fysiologiska betydelse. J Exp Bot 47:1813–1832

Kevany B, Tieman DM, Taylor M, Dal Cin V, Klee H (2007) Etylenreceptornedbrytning styr tidpunkten för mognad i tomatfrukt. Plant J 51:458–567

Kevany BM, Taylor MG, Klee HJ (2008) Fruktspecifikt undertryckande av etylenreceptorn LeETR4 resulterar i tidig mognad tomatfrukt. Plant Biotechnol J 6:295–300

Klee HJ (2004) Etensignaltransduktion. Flytta bortom Arabidopsis. Plant Physiol 135:660–667

Klee HJ (2010) Att förbättra smaken av färsk frukt: genomik, biokemi och bioteknik. New Phytol 187:44–56

Klee HJ, Giovannoni JJ (2011) Genetik och kontroll av tomatfruktmognad och kvalitetsattribut. Annu Rev Genet 45:41–59

Klee HJ, Hayford MB, Kretzmer KA, Barry GF, Kishore GM (1991) Kontroll av etylensyntes genom uttryck av ett bakteriellt enzym i transgena tomatplantor. Plant Cell 3:1187–1194

Kosma DK, Parsons EP, Isaacson T, Lu S, Rose JKC, Jenks MA (2010) Fruktnagelbandslipidkompositioner under utveckling i tomatmognadsmutanter. Physiol Plant 139:107–117

Kou X, Watkins CB, Gan SS (2012) Arabidopsis AtNAP reglerar fruktens ålder. J Exp Bot 63:6139–6147

Kovacs K, Fray RG, Tikunov Y, Graham N, Bradley G, Seymour GB, Bovy AG, Grierson D (2009) Effekt av pleiotropa mognadsmutationer på flyktig smakbiosyntes. Phytochemistry 70:1003–1008

Kumar R, Sharma MK, Kapoor S, Tyagi AK, Sharma AK (2012) Transkriptomanalys av rin mutant frukt och in silico analys av promotorer av differentiellt reglerade gener ger insikt i LeMADS-RIN-reglerade etenberoende såväl som etenoberoende aspekter av mognad i tomat. Mol Genet Genomics 287:189–203

Laguna L, Casado CG, Heredia A (1998) Flavonoidbiosyntes i tomatfruktnagelband efter in vivo-inkorporering av 3H-fenylalaninprekursor. Physiol Plant 105:491–498

Leclercq J, Adams-Phillips L, Zegzouti H, Jones B, Latche A et al (2002) LECTR1, en tomat CTR1-liknande gen, visar etylensignaleringsförmåga i Arabidopsis och nya uttrycksmönster i tomat. Plant Physiol 130:1132–1142

Lee JM, Joung JG, McQuinn R, Chung MY, Fei Z, Tieman D, Klee H, Giovannoni J (2012) Kombinerad transkriptom, genetisk mångfald och metabolitprofilering i tomatfrukt avslöjar att etylenresponsfaktorn SLERF6 spelar en viktig roll vid mognad och karotenoidackumulering. Anläggning J 70:191–204

Lewinsohn E, Sitrit Y, Bar E, Azulay Y, Meir A, Zamir D, Tadmor Y (2005a) Karotenoidpigmentering påverkar den flyktiga sammansättningen av tomat- och vattenmelonfrukter, vilket framgår av jämförande genetisk analys. J Agric Food Chem 53:3142-3148

Lewinsohn E, Sitrit Y, Bar E, Azulay Y, Ibdah M, Meir A, Yosef E, Zamir D, Tadmor Y (2005b) Inte bara färger – karotenoidnedbrytning som en länk mellan pigmentering och arom i tomat- och vattenmelonfrukt. Trender Food Sci Technol 16:407–415

Li F, Murillo C, Wurtzel ET (2007) Majs Y9 kodar för en produkt som är nödvändig för 15-cis-z-karotenisomerisering. Plant Physiol 144:1181–1189

Lin Z, Arciga-Reyes L, Zhong S, Alexander L, Hackett R, Wilson I, Grierson D (2008a). J Exp Bot 59:4271–4287

Lin Z, Hong Y, Yin M, Li C, Zhang K, Grierson D (2008b) Ett tomat HD-zip-homeobox-protein, LeHB-1, spelar en viktig roll i blommors organogenes och mognad. Anläggning J 55:301–310

Lin Z, Zhong S, Grierson D (2009) Nya framsteg inom etenforskning. J Exp Bot 60:3311–3336

Luque P, Bruque S, Heredia A (1995) Vattenpermeabilitet hos isolerade kutikulära membran: en strukturell analys. Arch Biochem Biophys 317:417–422

Manning K, Tor M, Poole M, Hong Y, Thompson AJ, King GJ, Giovannoni JJ, Seymour GB (2006) A naturally occurring epigenetic mutation in a gene encoding an SPB-box transcription factor inhibits tomato fruit ripening. Nat Genet 38:949–952

Marín-Rodríguez MC, Orchard J, Seymour GB (2002) Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. J Exp Bot 53:2115–2119

Martel C, Vrebalov J, Tafelmeyer P, Giovannoni JJ (2011) The tomato MADS-box transcription factor RIPENING INHIBITOR interacts with promoters involved in numerous ripening processes in a COLORLESS NONRIPENING-dependent manner. Plant Physiol 157:1568–1579

Matas AJ, Gapper NE, Chung MY, Giovannoni JJ, Rose JK (2009) Biology and genetic engineering of fruit maturation for enhanced quality and shelf-life. Curr Opin Biotechnol 20:197–203

Matas AJ, Yeats TH, Buda GJ, Zheng Y, Chatterjee S, Tohge T, Ponnala L, Adato A, Aharoni A, Stark R, Fernie AR, Fei Z, Giovannoni JJ, Rose JK (2011) Tissue- and cell-type specific transcriptome profiling of expanding tomato fruit provides insights into metabolic and regulatory specialization and cuticle formation. Plant Cell 23:3893–3910

Mathieu S, Dal Cin V, Fei Z, Li H, Bliss P, Taylor M, Klee H, Tieman D (2009) Flavor compounds in tomato fruits: identification of loci and potential pathways affecting volatile composition. J Exp Bot 60:325–337

Matthews PD, Luo RB, Wurtzel ET (2003) Maize phytoene desaturase and z-carotene desaturase catalyze a poly-Z desaturation pathway: implications for genetic engineering of carotenoid content among cereal crops. J Exp Bot 54:2215–2230

McMurchie EJ, McGlasson WB, Eaks IL (1972) Treatment of fruit with propylene gives information about the biogenesis of ethylene. Nature 237:235–236

Miao Y, Zentgraf U (2007) The antagonist function of Arabidopsis WRKY53 och ESR/ESP in leaf senescence is modulated by the jasmonic and salicylic acid equilibrium. Plant Cell 19:819–830

Mintz-Oron S, Mandel T, Rogachev I, Feldberg L, Lotan O, Yativ M, Wang Z, Jetter R, Venger I, Adato A, Aharoni A (2008) Gene expression and metabolism in tomato fruit surface tissues. Plant Physiol 147:823–851

Mohorianu I, Schwach F, Jing R, Lopez-Gomollon S, Moxon S, Szittya G, Sorefan K, Moulton V, Dalmay T (2011) Profiling of short RNAs during fleshy fruit development reveals stage-specific sRNAome expression patterns. Plant J 67:232–246

Moxon S, Jing R, Szittya G, Schwach F, Rusholme Pilcher RL, Moulton V, Dalmay T (2008) Deep sequencing of tomato short RNAs identifies microRNAs targeting genes involved in fruit ripening. Genome Res 18:1602–1609

Muir SR, Collins GJ, Robinson S, Hughes S, Bovy A, De Vos RCH, van Tunen AJ, Verhoeyen ME (2001) Overexpression of petunia chalcone isomerase in tomato results in fruit containing increased levels of flavonols. Nat Biotechnol 19:470–474

Nakatsuka A, Murachi S, Okunishi H, Shiomi S, Nakano R, Kubo Y, Inaba A (1998) Differential expression and internal feedback regulation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase, 1-aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase, and ethylene receptor genes in tomato fruit during development and ripening. Plant Physiol 118:1295–1305

Nashilevitz S, Melamed-Bessudo C, Izkovich Y, Rogachev I, Osorio S, Itkin M, Adato A, Pankratov I, Hirschberg J, Fernie AR, Wolf S, Usadel B, Levy AA, Rumeau D, Aharoni A (2010) An orange ripening mutant links plastid NAD(P)H dehydrogenase complex activity to central and specialized metabolism during tomato fruit maturation. Plant Cell 22:1977–1997

Oeller PW, Wong LM, Taylor LP, Pike DA, Theologis A (1991) Reversible inhibition of tomato fruit senescence by antisense RNA. Science 254:437–439

O’Malley RC, Rodriguez FI, Esch JJ, Binder BM, O’Donnell P, Klee HJ, Bleecker AB (2005) Ethylene-binding activity, gene expression levels, and receptor system output for ethylene receptor family members from Arabidopsis and tomato. Plant J 41:651–659

Osorio S, Alba R, Damasceno CM, Lopez-Casado G, Lohse M, Zanor MI, Tohge T, Usadel B, Rose JK, Fei Z, Giovannoni JJ, Fernie AR (2011) Systems biology of tomato fruit development: combined transcript, protein, and metabolite analysis of tomato transcription factor (inte heller, rin) and ethylene receptor (Nr) mutants reveals novel regulatory interactions. Plant Physiol 157:405–425

Pan IL, McQuinn R, Giovannoni JJ, Irish VF (2010) Functional diversification of AGAMOUS lineage genes in regulating tomato flower and fruit development. J Exp Bot 61:1795–1806

Pan Y, Bradley G, Pyke K, Ball G, Lu C, Fray R, Marshall A, Jayasuta S, Baxter C, van Wijk R, Boyden L, Cade R, Chapman NH, Fraser PD, Hodgman C, Seymour GB (2013) Network inference analysis identifies an APRR2-like gene linked to pigment accumulation in tomato and pepper fruits. Plant Physiol 161:1476–1485

Peschel S, Franke R, Schreiber L, Knoche M (2007) Composition of the cuticle of developing sweet cherry fruit. Phytochemistry 68:1017–1025

Picton S, Barton SL, Bouzayen M, Hamilton AJ, Grierson D (1993) Altered fruit ripening and leaf senescence in tomatoes expressing an antisense ethylene-forming enzyme transgene. Plant J 3:469–481

Pirrello J, Jaimes-Miranda F, Sanchez-Ballesta MT, Tournier B, Khalil-Ahmad Q, Regad F, Latche A, Pech JC, Bouzayen M (2006) Sl-ERF2, a tomato ethylene response factor involved in ethylene response and seed germination. Plant Cell Physiol 47:1195–1205

Pnueli L, Hareven D, Rounsley SD, Yanofsky MF, Lifschitz E (1994) Isolation of the tomato AGAMOUS gen TAG1 and analysis of its homeotic role in transgenic plants. Plant Cell 6:163–173

Potuschak T, Lechner E, Parmentier Y, Yanagisawa S, Grava S, Koncz C, Genschik P (2003) EIN3-dependent regulation of plant ethylene hormone signaling by two Arabidopsis F box proteins: EBF1 and EBF2. Cell 115:679–689

Powell AL, Nguyen CV, Hill T, Cheng KL, Figueroa-Balderas R, Aktas H, Ashrafi H, Pons C, Fernández-Muñoz R, Vicente A, Lopez-Baltazar J, Barry CS, Liu Y, Chetelat R, Granell A, Van Deynze A, Giovannoni JJ, Bennett AB (2012) Uniform ripening encodes a Golden 2-like transcription factor regulating tomato fruit chloroplast development. Science 336:1711–1715

Prasanna V, Prabha TN, Tharanathan RN (2007) Fruit ripening phenomena-an overview. Critical Rev Food Sci Nut 47:1–19

Qiao H, Chang KN, Yazaki J, Ecker JR (2009) Interplay between ethylene, ETP1/ETP2 F-box proteins, and degradation of EIN2 triggers ethylene responses in Arabidopsis. Genes Dev 23:512–521

Qin G, Gu H, Ma L, Peng Y, Deng XW, Chen Z, Qu L-J (2007) Disruption of phytoene desaturase gene results in albino and dwarf phenotypes in Arabidopsis by impairing chlorophyll, carotenoid, and gibberellin biosynthesis. Nature Cell Res 17:471–482

Qin G, Wang Y, Cao B, Wang W, Tian S (2012) Unraveling the regulatory network of the MADS box transcription factor RIN in fruit ripening. Plant J 70:243–255

Reina-Pinto JJ, Yephremov A (2009) Surface lipids and plant defenses. Plant Physiol Biochem 47:540–549

Resnick JS, Wen C-K, Shockey JA, Chang C (2006) REVERSION-TO-ETHYLENE SENSITIVITY1, a conserved gene that regulates ethylene receptor function in Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA 103:7917–7922

Rodriguez F, Esch J, Hall A, Binder B, Schaller GE, Bleecker AB (1999) A copper cofactor for the ETR1 receptor from Arabidopsis. Science 283:996–998

Rodriguez-Concepcion M, Boronat A (2002) Elucidation of the methylerythritol phosphate pathway for isoprenoid biosynthesis in bacteria and plastids. A metabolic milestone achieved through genomics. Plant Physiol 130:1079–1089

Rodríguez-Gacio MC, Iglesias-Fernández R, Carbonero P, Matilla AJ (2012) Softening-up mannan-rich cell walls. J Exp Bot 63:3976–3988

Rohdich F, Zepeck F, Adam P, Hecht S, Kaiser J, Laupitz R, Grawert T, Amslinger S, Eisenreich W, Bacher A, Arigoni D (2003) The deoxyxylulose phosphate pathway of isoprenoid biosynthesis: studies on the mechanisms of the reactions catalyzed by IspG and IspH protein. Proc Natl Acad Sci USA 100:1586–1591

Rose JK, Lee HH, Bennett AB (1997) Expression of a divergent expansin gene is fruit-specific and ripening-regulated. Proc Natl Acad Sci USA 94:5955–5960

Rottmann WH, Peter GF, Oeller PW, Keller JA, Shen NF, Nagy BP, Taylor LP, Campbell AD, Theologis A (1991) 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase in tomato is encoded by a multigene family whose transcription is induced during fruit and floral senescence. J Mol Biol 222:937–961

Sacher JA (1973) Senescence and post harvest physiology. Annu Rev Plant Physiol 24:197–310

Saladié M, Rose JK, Cosgrove DJ, Catalá C (2006) Characterization of a new xyloglucan endotransglucosylase/hydrolase (XTH) from ripening tomato fruit and implications for the diverse modes of enzymic action. Plant J. 47:282–295

Saladié M, Matas AJ, Isaacson T, Jenks MA, Goodwin SM, Niklas KJ, Xiaolin R, Labavitch JM, Shackel KA, Fernie AR, Lytovchenko A, O'Neill MA, Watkins CB, Rose JK (2007) A reevaluation of the key factors that influence tomato fruit softening and integrity. Plant Physiol 144:1012–1028

Schaffer RJ, Friel EN, Souleyre EJF, Bolitho K, Ledger KTS, Bowen JH, Ma J-H, Nain B, Cohen D, Gleave AP, Crowhurst RN, Janssen BJ, Yao J-L, Newcomb RD (2007) A genomics approach reveals that aroma production in apple is controlled by ethylene predominantly at the final step in each biosynthetic pathway. Plant Physiol 144:1899–1912

Seymour GB, Manning K, Eriksson EM, Popovich AH, King GJ (2002) Genetic identification and genomic organization of factors affecting fruit texture. J Exp Bot 53:2065–2071

Seymour GB, Ryder CD, Cevik V, Hammond JP, Popovich A, King GJ, Vrebalov J, Giovannoni JJ, Manning K (2011) A SEPALLATA gene is involved in the development and ripening of strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) fruit, a non-climacteric tissue. J Exp Bot 62:1179–1188

Seymour GB, Østergaard L, Chapman NH, Sandra Knapp S, Martin C (2013) Fruit development and ripening. Annu Rev Plant Biol 64:1–11

Shi JX, Adato A, Alkan N, He Y, Lashbrooke J, Matas AJ, Meir S, Malitsky S, Isaacson T, Prusky D, Leshkowitz D, Schreiber L, Granell AR, Widemann E, Grausem B, Pinot F, Rose JK, Rogachev I, Rothan C, Aharoni A (2013) The tomato SlSHINE3 transcription factor regulates fruit cuticle formation and epidermal patterning. New Phytol 197:468–480

Shivaprasad PV, Chen HM, Patel K, Bond DM, Santos BA, Baulcombe DC (2012) A microRNA superfamily regulates nucleotide binding site-leucine-rich repeats and other mRNAs. Plant Cell 24:859–874

Smirnoff N, Conklin PL, Loewus FA (2001) Biosynthesis of ascorbic acid in plants: a renaissance. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 52:437–467

Smith CJ, Watson CF, Bird CR, Ray J, Schuch W, Grierson D (1990) Expression of a truncated tomato polygalacturonase gene inhibits expression of the endogenous gene in transgenic plants. Mol Gen Genet 224:477–481

Smith DL, Abbott JA, Gross KC (2002) Down-regulation of tomato beta-galactosidase 4 results in decreased fruit softening. Plant Physiol 129:1755–1762

Sozzi GO, Greve LC, Prody GA, Labavitch JM (2002) Gibberellic acid, synthetic auxins, and ethylene differentially modulate alpha-L-arabinofuranosidase activities in antisense 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase tomato pericarp discs. Plant Physiol 129:1330–1340

Speirs J, Lee E, Holt K, Yong-Duk K, Scott NS, Schuch W, Loveys B (1998) Genetic manipulation of alcohol dehydrogenase levels in ripening tomato fruit affects the balance of some flavor aldehydes and alcohols. Plant Physiol 117:1047–1058

Tacken E, Ireland H, Gunaseelan K, Karunairetnam S, Wang D, Schultz K, Bowen J, Atkinson RG, Johnston JW, Putterill J, Hellens RP, Schaffer RJ (2010) The role of ethylene and cold temperature in the regulation of the apple POLYGALACTURONASE1 gene and fruit softening. Plant Physiol 153:294–305

Tadiello A, Pavanello A, Zanin D, Caporali E, Colombo L, Rotino GL, Trainotti L, Casadoro G (2009) A PLENA-like gene of peach is involved in carpel formation and subsequent transformation into a fleshy fruit. J Exp Bot 60:651–661

Tatsuki M, Mori H (2001) Phosphorylation of tomato 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase, LE-ACS2, at the C-terminal region. J Biol Chem 276:28051–28057

Thomas TR, Shackel KA, Matthews MA (2008) Mesocarp cell turgor in Vitis vinifera L. berries throughout development and its relation to firmness, growth, and the onset of ripening. Planta 228:1067–1076

Tian MS, Prakash S, Elgar HJ, Young H, Burmeister DM, Ross GS (2000) Responses of strawberry fruit to 1-methylcyclopropene (1-MCP) and ethylene. Plant Growth Regul 32:83–90

Tian L, Magallanes-Lundback M, Musetti V, DellaPenna D (2003) Functional analysis of b- and e-ring carotenoid hydroxylases in Arabidopsis. Plant Cell 15:1320–1330

Tieman DM, Taylor MG, Ciardi JA, Klee HJ (2000) The tomato ethylene receptors NR and LeETR4 are negative regulators of ethylene response and exhibit functional compensation within a multigene family. Proc Natl Acad Sci USA 97:5663–5668

Tieman DM, Ciardi JA, Taylor MG, Klee HJ (2001) Members of the tomato LeEIL (EIN3-like) gene family are functionally redundant and regulate ethylene responses throughout plant development. Plant J 26:47–58

Tieman D, Taylor M, Schauer N, Fernie AR, Hanson AD, Klee HJ (2006) Tomato aromatic amino acid decarboxylases participate in synthesis of the flavor volatiles 2-phenylethanol and 2 phenylacetaldehyde. Proc Natl Acad Sci USA 103:8287–8292

Tieman DM, Zeigler M, Schmelz E, Taylor MG, Rushing S, Jones JB, Klee HJ (2010) Functional analysis of a tomato salicylic acid methyl transferase and its role in synthesis of the flavor volatile methyl salicylate. Plant J 62:113–123

Tieman DM, McIntyre L, Blandon-Ubeda A, Bies D, Odabasi A, Rodriguez G, van der Knaap E, Taylor M, Goulet C, Mageroy MH, Snyder D, Colquoun T, Moskowitz H, Sims C, Clark D, Bartoshuk L, Klee H (2012) The chemical interactions underlying tomato flavor preferences. Curr Biol 22:1–5

Tigchelaar EC, Mcglasson WB, Franklin MJ (1978) Natural and ethephon-stimulated ripening of F1 hybrids of the ripening inhibitor (rin) and non-ripening (inte heller) mutants of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) Australian J. Plant Physiol 5:449–456

Tomato Genome Consortium (2012) The tomato genome sequence provides insights into fleshy fruit evolution. Nature 485:635–641

Treutter D (2005) Significance of flavonoids in plant resistance and enhancement of their biosynthesis. Plant Biol 7:581–591

Verhoeyen ME, Bovy A, Gollins G, Muir S, Robinson S, de Vos CHR, Colliver S (2002) Increasing antioxidant levels in tomatoes through modification of the flavonoid biosynthetic pathway. J Exp Bot 53:2099–2106

Vicente AR, Saladié M, Rose JKC, Labavitch JM (2007) The linkage between cell wall metabolism and fruit softening: looking to the future. J Sci Food Agric 87:1435–1448

Vogel JT, Tieman DM, Sins CA, Odabasi AZ, Clark DG, Klee HJ (2010) Carotenoid content impacts flavor acceptability in tomato (Solanum lycopersicum). J Sci Food Agric 90:2233–2240

Vogg G, Fischer S, Leide J, Emmanuel E, Jetter R, Levy AA, Riederer M (2004) Tomato fruit cuticular waxes and their effects on transpiration barrier properties: functional characterization of a mutant deficient in a very-long-chain fatty acid b-ketoacyl-CoA synthase. J Exp Bot 55:1401–1410

Vrebalov J, Ruezinsky D, Padmanabhan V, White R, Medrano D, Drake R, Schuch W, Giovannoni J (2002) A MADS-låda gene necessary for fruit ripening at the tomato ripening-inhibitor (rin) locus. Science 296:343–346

Vrebalov J, Pan IL, Arroyo AJ, McQuinn R, Chung M, Poole M, Rose J, Seymour G, Grandillo S, Giovannoni J, Irish VF (2009) Fleshy fruit expansion and ripening are regulated by the tomato SHATTERPROOF gen, TAGL1. Plant Cell 21:3041–3062

Wakabayashi K, Hoson T, Huber DJ (2003) Methyl de-esterification as a major factor regulating the extent of pectin depolymerization during fruit ripening: a comparison of the action of avocado (Persea americana) and tomato (Lycopersicon esculentum) polygalacturonases. J Plant Physiol 160:667–673

Wang J, Chen G, Hu Z, Chen X (2007) Cloning and characterization of the EIN2-homology gene LeEIN2 from tomato. DNA Seq 18:33–38

Wheeler GL, Jones MA, Smirnoff N (1998) The biosynthetic pathway of vitamin C in higher plants. Nature 393:365–369

Wilkinson JQ, LanahanMB YenH-C, Giovannoni JJ, Klee HJ (1995) An ethylene-inducible component of signal transduction encoded by Aldrig-Ripe. Science 270:1807–1809

Winkel-Shirley B (2001) Flavonoid biosynthesis. A colorful model for genetics, biochemistry, cell biology, and biotechnology. Plant Physiol 126:485–493

Wong D (2008) Enzymatic deconstruction of backbone structures of the ramified regions in pectins. Protein J 27:30–42

Yahia EM, Contreras-Padilla M, Gonzalez-Aguilar G (2001) Ascorbic acid content in relation to ascorbic acid oxidase activity and polyamine content in tomato and bell pepper fruits during development, maturation, and senescence. Lebensm-Wiss u-Technol 34:452–457

Yang Y, Wu Y, Pirrello J, Regad F, Bouzayen M, Deng W, Li Z (2010) Silencing Sl-EBF1 och Sl-EBF2 expression causes constitutive ethylene response phenotype, accelerated plant senescence, and fruit ripening in tomato. J Exp Bot 61:697–708

Yeats TH, Howe KJ, Matas AJ, Buda GJ, Thannhauser TW, Rose JKC (2010) Mining the surface proteome of tomato (Solanum lycopersicum) fruit for proteins associated with cuticle biogenesis. J Exp Bot 61:3759–3771

Yeats TH, Buda GJ, Wang Z, Chehanovsky N, Moyle LC, Jetter R, Schaffer AA, Rose JKC (2012a) The fruit cuticle of wild tomato species exhibit architectural and chemical diversity, providing a new model for studying the evolution of cuticle function. Plant J 69:655–666

Yeats TH, Martin LBB, Viart HM-F, Isaacson T, He Y, Zhao L, Matas AJ, Buda GJ, Domozych DS, Clausen MH, Rose JKC (2012b) The identification of cutin synthase: formation of the plant polyester cutin. Nat Chem Bio 8:609–611

Zhang B, Chen K, Bowen J, Allan A, Espley R, Karunairetnam S, Ferguson I (2006) Differential expression within the LOX gene family in ripening kiwifruit. J Exp Bot 57:3825–3836

Zhong S, Lin Z, Grierson D (2008) Tomato ethylene receptor-CTR interactions: visualization of NEVER-RIPE interactions with multiple CTRs at the endoplasmic reticulum. J Exp Bot 59:965–972

Zhong S, Fei Z, Chen Y-R, Zheng Y, Huang M, Vrebalov J, McQuinn R, Gapper N, Liu B, Xiang J, Shao Y, Giovannoni JJ (2013) Single-base resolution methylomes of tomato fruit development reveal epigenome modifications associated with ripening. Nat Biotechnol 31:154–159


Material och metoder

Plasmidkonstruktion

The target site for CRISPR/Cas9-mediated RIPENING INHIBITOR (RIN) mutagenesis was selected using the CRISPR-P program (http://cbi.hzau.edu.cn/cgi-bin/CRISPR) (Supporting Information, Fig. S1a). The 20-bp oligos were cloned into AtU3d and AtU3b vectors and the sgRNA expression cassettes assembled into pYLCRISPR/Cas9-Ubi-H binary plasmid by Golden Gate ligation (Ma et al., 2015 ). Agrobacterium tumefaciens-mediated transfer of T-DNA was used for stable transformation of tomato (Sun et al., 2006 Kimura and Sinha, 2008 ). For the mutation analysis, genomic DNA was extracted from young tomato leaves using a Plant Genomic DNA Kit (Tiangen, China) and used as a template to amplify the RIN fragment using PCR and the fragments sent for sequencing. The primer pairs used for vector construction and mutation analyses are listed in Table S1.

Växtmaterial och tillväxtförhållanden

Wild-type (WT) tomato (Solanum lycopersicum Alisa Craig, AC) and RIN-CRISPR seedlings were grown in a glasshouse under long-day conditions (16 h : 8 h, light : dark photperiod) at a temperature of 26°C. For gene expression analysis, organs were collected, frozen in liquid N2, and stored at −80°C until RNA extraction. Three independent samplings were performed for each measurement.

Tomato fruit nuclei isolation and Western blotting

Nuclei were isolated from tomato fruits picked at B + 5 stage and assayed for RIN protein. Fruit samples were ground into a powder under liquid N2 and the mixture was extracted with buffer (0.25 M sucrose, 10 mM Tris-HCl pH7.5, 1 mM MgCl2, 0.5% PVP, 0.5% Triton X-100, Roche protease inhibitor tablet) and the suspension filtered using miracloth (475855 Millipore, Pittsburgh, PA, USA). After centrifugation at 10 000 g for 10 min, the precipitate was washed with extraction buffer and centrifuged again at 10 000 g for 10 min, and the pellet was resuspended in percoll buffer (0.25 M sucrose, 95% Percoll, 10 mM Tris-HCl pH7.5, Roche protease inhibitor tablet). The floating layer was collected after centrifugation at 10 000 g for 10 min, diluted to 30% with extraction buffer, centrifuged at 10 000 g for 10 min, to pellet the nuclei and stored at −80°C or used for SDS-PAGE assay.

Western blotting was carried out as described (Li et al., 2018). Briefly, protein extracts were separated on 10% SDS-PAGE gels and transferred to a polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane blocked in 5% nonfat milk for 2 h at room temperature. A specific polyclonal antibody produced in rabbit raised against the C-terminal end of RIN (amino acids 75–242) was added in a ratio of 1 : 1000 and incubated for 2 h at room temperature. Membranes were washed with Tris-buffered saline plus Tween-20 three times, 15 min each time. The anti-rabbit horseradish peroxidase secondary antibody was added at a ratio of 1 : 10 000 and incubated for 2 h at room temperature. After three washes with Tris-buffered saline plus Tween-20, the membranes were visualized using a horseradish peroxidase-enhanced chemiluminescence system.

Ethylene production measurement

For the measurement of ethylene (ET) production, each fruit was placed in a sealed gas-tight 300 ml container at 25°C for 1 h, and a 1 ml headspace gas sample was analyzed using GC (6890N GC system Agilent, Folsom, CA, USA) equipped with a flame ionization detector (Ma et al., 2016 ).

Colour measurement

A Hunter Lab Mini Scan XE Plus colorimeter (Hunter Associates Laboratory Inc., Reston, VA, USA) with the CIE L*a*b colour system was chosen for pericarp colour assay (Komatsu et al., 2016). At least six biological replicates were used for each assay.

Carotenoid content assay

Carotenoid extraction followed the methods reported by Xu et al. ( 2006 ) 100 mg tomato fruit samples were ground to a powder and frozen at −80°C, 250 μl methanol was added, vortexed to mix, followed by 500 μl chloroform, vortexed again and 250 μl 50 mM Tris buffer (pH 7.5, containing 1 M NaCl) was added, followed by vortexing. After centrifugation (15 000 g for 10 min at 4°C), the lower chloroform phase was collected. The chloroform extraction was repeated two or three times and the chloroform phases combined and dried under flowing N2. The residue was dissolved in 100 μl ethyl acetate (HPLC grade), and 50 μl transferred to HPLC sample analysis tubes. Carotenoid content was assayed according to the methods reported by Zheng et al. ( 2015 ): A volume of 20 μl for each sample was absorbed for HPLC analysis, carried out using a Waters liquid chromatography system (e2695) equipped with a photodiode array (PDA) detector (2998). A C30 carotenoid column (250 mm × 4.6 mm YMC, Japan) was used to elute the carotenoids with a methanol: H2O (9 : 1, v/v, eluent A) solution and methyl tert-butyl ether (MTBE) (100%, eluent B) solution containing 0.01% (w/v) butylated hydroxytoluene (BHT). The linear gradient program was performed as follows: 8% B to 25% B for 30 min, 25% B to 70% B for 5 min, 70% B for 5 min, and back to the initial 8% B for re-equilibration for 10 min. The flow rate was 1 ml min −1 . To avoid light degradation of carotenoids the extraction and analysis were performed under subdued light.

Firmness measurement

The firmness of the pericarp was assayed using a penetrometer (TA-XT2i texture analyzer Stable Micro Systems, Stable Micro Systems Ltd, Surrey, UK) according to the manufacturer's instructions. At least six biological replicates were used for each assay.

Volatiles assays

Measurements of volatiles were carried out according to Zhang et al. ( 2010 ), with modifications. First, 5 g of frozen flesh tissue was ground in liquid N2 and transferred to a 15-ml vial containing 5 ml of saturated sodium chloride solution. Before vials were sealed, 20 μl of 2-octanol (0.8 mg ml −1 ) was added as an internal standard and vortexed for 10 s.

For solid-phase microextraction (SPME), samples then were equilibrated at 40°C for 30 min before being exposed to a fiber coated with 50/30 μm DVB/CAR/PDMS (Supelco Co., Bellefonte, PA, USA). Volatiles were subsequently desorbed over 5 min at 230°C into the splitless injection port of the GC-flame ionization detector (FID). An Agilent 7890A GC equipped with an FID and a DB-WAX column (30 m × 0.32 mm, 0.25 μm internal diameter J&W Scientific, Folsom, CA, USA) was used for volatile analysis. Chromatography conditions were as follows: injector, 230°C initial oven temperature, 34°C held for 2 min, increased by 2°C min −1 to 60°C, then increased by 5°C min −1 to 220°C, and held for 2 min. Nitrogen was used as carrier gas at 1.0 ml min −1 . Volatiles were identified by comparison with retention times of authentic standards. Further identification of volatile compounds was by capillary gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) (7890A-5975C) performed using an HP-5 MS column (30 m × 0.25 mm, 0.25 μm J&W Scientific, Folsom, CA). Injection port temperature was 240°C, with a split ratio of 5 : 1. Helium was used as the carrier gas at a rate of 1.0 ml min −1 . The column temperature was held at 40°C for 2 min, increased by 5°C min −1 to 60°C, then increased by 10°C min −1 to 250°C, and held for 5 min. MS conditions were as follows: ion source, 230°C electron energy, 70 eV multiplier voltage, 1247 V GC-MS interface zone, 280°C and a scan range, 30–250 mass units. Volatiles were identified on the basis of a comparison of their electron ionization (EI) mass spectra to published data and data from authentic standards. Quantitative determination of compounds was carried out using the peak of the internal standard as a reference value and calculated on the basis of standard curves constructed with authentic compounds.

Ethylene, 1-methylcyclopropene (1-MCP) and propylene treatment

Tomato fruits at the mature green (MG) stage, before any sign of colour change, were placed in an air-tight 1-l plastic container with 100 ppm ET, 1000 ppm propylene or 10 ppm 1-MCP. 1000 ppm propylene is equivalent to 10 ppm ET treatment (McMurchie et al., 1972 ) and is used in order to distinguish it from endogenous ET production by GC equipment. The treatment was conducted continually in an incubator under a 16 h : 8 h, light : dark photoperiod at 25°C, with at least three biological replicates for each treatment. RIN-CRISPR tomato fruits treated with ET for 48 h, and control WT and RIN-CRISPR treated with air, were chosen for gene expression assay using qRT-PCR. The gas environments (air, ET, propylene, 1-MCP) were replenished every 24 h.

RNA isolation and quantitative reverse transcription (qRT)-PCR

Isolation of RNA from tomato fruit pericarp at different ripening stages was as described previously (Zhu et al., 2015). Total RNA extraction from tomato fruit pericarp was carried out using Trizol reagent, and RNA integrity was verified by 1.5% (v/v) agar gel electrophoresis. Genomic DNA was removed from RNA preparations by digestion with DNase I (Invitrogen, cat. no. AM1907), and RNA quality and quantity were confirmed by spectrophotometry (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA NanoDrop 1000). RNA was reverse-transcribed into cDNA using cDNA synthesis kit (Bio-RAD, cat. no. 1708890) according to the manufacturer's instructions. qRT-PCR was conducted using FastStart Essential DNA Green Master (Roche, cat. no. 06402712001) with a LightCycler480 (Roche). Relative gene expression values were calculated using the 2 -ΔΔCt method (Livak and Schmittgen, 2001 ). The tomato ACTIN gene (Solyc03g078400) was used as an internal reference gene. At least three biological replicates were included for each point, and each replicate was from independent sampling. The primer pairs used in qRT-PCR analyses are listed in Table S2.

Water loss

The water lost by tomato fruits was calculated as FW (%) = fruit weight (g) – fresh fruit weight (g)/ fresh fruit weight (g) × 100%. More than ten biological replicates were used for each assay.

Promoter sequence and motif assay

Promoter sequences 2.0 kb in length were downloaded from Sol Genomics Network (https://solgenomics.net/), various CArG-box elements were from Fujisawa et al. ( 2013 ). The GCC-box, a characteristic cis-element binding site for ERFs, was from Licausi et al. ( 2013 ). An AP2/ERF binding motif, ATCTA was from Welsch et al. ( 2007 ).

Statistisk analys

Microsoft Excel 2010 and S PSS (IBM SPSS Statistics, v.22 SPSS Inc., Chicago, IL, USA) were used for statistical analyses. Duncan's multiple range test was used (P < 0,05).


WineCrisp: New Apple Was More Than 20 Years In The Making

A new, late-ripening apple named WineCrisp&trade which carries the Vf gene for scab resistance was developed over the past 20 plus years through classical breeding techniques, not genetic engineering. License to propagate trees will be made available to nurseries through the University of Illinois.

Being resistant to apple scab is a big plus for growers, said University of Illinois plant geneticist Schuyler Korban, as it significantly reduces the number of chemical fungicide sprays. "Apple scab is the number one disease that growers have to spray for &ndash 15 to 20 times per season &ndash so not having to spray for apple scab lowers the cost for the grower and is better for the environment."

Why does it take over 20 years to make an apple? "It takes a long time to develop an apple because you want to test it in different locations, you want to observe it over a number of years, and it takes awhile for an apple to get noticed," said geneticist Schuyler Korban. "I liked it the first time I saw it and I liked the flavor. It has an excellent mix of sugar and acid and a very pleasant flavor, but I was hesitant because of the finish &ndash it's not glossy."

Korban thought the finish might pose a problem because consumers are accustomed to seeing waxed fruit in stores and may not like the matte finish that Korban calls "scarfy" or dull. "Red Delicious is a very good looking apple, but has no flavor, very bland. It's still ranked as the number one apple in the industry however, there are more new apple varieties available now."

After some time, Korban decided that the crispness and the flavor would be more important factors to consumers than the finish and continued to develop the new apple.

His research, in collaboration with breeders at Rutgers and Purdue Universities, will be published in a 2009 issue of the journal of HortScience, and a U.S. patent is currently pending. The apple is available now to nurseries who want to apply for a license to propagate trees and make them available to apple growers nationwide. "There is a nursery in the southeastern part of the United States that really liked the apple and feel that there is a market for it in the south so they're getting a license to grow it."

It also takes time for a new orchard or even for an existing orchard to plant new apple varieties. But when WineCrisp&trade cuttings are grafted into a fast-growing root stock, Korban says there could be fruit on the tree in as little as three years.

Korban said that the tree is extremely productive and the fruit is firm, but it's not a bright red color. "It's more of a dark red and looks like a deep red wine so we wanted to include 'wine' in the name. It also resembles an older variety that consumers are familiar with called Winesap. "When you pick it up and squeeze it, it's very firm," he said. "We used to call it 'the Rock.' We wanted that characteristic to be in the name so we added 'crisp' and named it WineCrisp&trade.

"There's a market for apples with different flavors, different textures, different ripening and maturity dates &ndash you don't know what the likes and dislikes of the consumer will be," said Korban. "Some of our recent releases are varieties that focus on late ripening which would prolong the apple-growing season and WineCrisp&trade matures two weeks after Red Delicious. They can be harvested all the way through to the end of October. And in good cold storage, they'll keep for eight to nine months. That's another important trait of this variety &ndash it keeps very well in cold storage."

The original cross in the breeding process was done at Rutgers in 1989. The seeds were grown into seedlings and inoculated with apple scab at Purdue. Those seedlings that demonstrated resistance to apple scab were split between the three universities as a part of the Purdue-Rutgers-Illinois (PRI) Cooperative Breeding Program, which has been very successful in naming and releasing over 25 disease-resistant apple varieties, some with other collaborating partners around the world. Because the University of Illinois made the selection, U of I will be the primary licensing institution.

Funding for the research was provided by the University of Illinois and PRI.

Berättelsekälla:

Material tillhandahålls av University of Illinois at Urbana-Champaign. Obs! Innehållet kan redigeras för stil och längd.


Legal status: western countries

In different Western countries, selected ripening agents are allowed to be applied to ripen specific fruits under controlled condition. In this process, ethylene is injected to the fruit ripening chambers in a controlled manner, to help instigating the ripening process [1].

Nordamerika

In USA, the United States’ NOSB [National Organic Standard Board] recommends the use of ethylene for post-harvest ripening of tropical fruits and de-greening of citrus this is stated in the ‘Formal Recommendation by the National Organic Standard Board (NOSB) to the Organic Program (NOP)’ [17]. The United States Environmental Protection Agency (EPA) allows the use of ethylene as plant growth regulator and herbicide. Additionally, ethylene is exempt from the requirement of a tolerance (maximum residue level) when used as a growth regulator on fruits and vegetables [71].

The regulations set by the Canadian Food Inspection Agency (CFIA) imposes that no person shall market, produce, import, export, or take part in interprovincial trade of fruits and vegetables unless it is not contaminated, edible, free of any live insect or other living thing that may be injurious to health, and produced hygienically [12]. CFIA gives more emphasis on ensuring the quality of water used in food and vegetable processing the following features are suggested to ensure production under hygienic conditions:

No stagnant or polluted water should be used in the washing or fluming of the produce

Only potable water is to be used in the final rinsing of the produce to remove any surface contaminant before packing

The final rinse water, if reused, is used only in the initial washing or fluming of the product.

Europa

United Kingdom’s Soil Association permits the use of ethylene to ripen bananas and kiwi [Soil Association Organic Standards, rev 16.4, June 2011] [19]. De UK Food Safety Act enacted in 1990 imposes that any person who renders any food injurious to health by means of any of the operations—adding any article or substance to the food, using any article or substance as an ingredient in the preparation of the food, abstracting any constituent from the food, and subjecting the food to any other process or treatment with intent that it shall be sold for human consumption, shall be guilty of an offense [14].

The European Food Safety Authority (EFSA) under the regulation (EC) No 396/2005 developed the Standard Sample Description (SSD), which is a standardized model for the reporting of harmonized data on analytical measurements of chemical substances present in food, feed, and water [72]. As an attempt to make significant reforms of the Common Market Organization (CMO) for certain agricultural products, the European Union extended its approach to the promotion, quality, and marketing standards for fresh and processed fruit and vegetables. Provisions for a management committee that apply to the fruit and vegetable sector as well as a range of other agricultural products came into effect from January 1, 2008, under Council Regulation (EC) No. 1234/2007. Key objectives of the regulation are as follows [73]:

Improvement of product quality

Boosting products’ commercial value

Promotion of products, whether in a fresh or processed form

Environmental measures and methods of production respecting the environment, including organic farming

Crisis prevention and management.

Other international organizations

Evidently, the laws in different developed countries do not completely prohibit using artificial ripening agents, and often permit the control use of ethylene gas for artificial fruit ripening. The International Federation of Organic Agriculture Movements’ (IFOAM) enlists ethylene gas as ‘Only for ripening fruits’ in the IFOAM Indicative List of Substances for Organic Production and Processing. Similarly, the Asia Regional Organic Standard (AROS) developed by Global Organic Market Access (GOMA) (a project of FAO), IFOAM, and UNCTAD (United Nations Conference on Trade and Development) permit the usage of ethylene for the ripening of kiwifruit, bananas, and other tropical fruits [74].


P. peruviana: One of the main drawbacks of P. peruviana seems to be the long growing season required before fruits can be harvested. Production of fruit can also be somewhat moderate. In addition, reliable sources for seed are limited. Some of these issues are being addressed by Dr. Durner in his trials.

An advantage of P. peruviana is that the plants are larger and more upright and that the fruit does not abscise when ripe, giving more control and easier conditions (not stooping on the ground) for harvesting. On the other hand, because they don’t abscise when ripe, they must be cut off the plant, which makes harvest more time consuming.

P. pruinosa: Ground cherry gives the grower a much longer harvest window and seems to be more productive than P. peruviana. There is also ample and varied sources of seed, though there is little documentation about specific differences between varieties. The major disadvantage of P. pruinosa is the very low, sprawling habit of the plant, which makes harvest difficult.

Mike Brown is the owner of Pitspone Farm — a small-acreage berry farm and nursery in central New Jersey.